恶性肿瘤可看作是肿瘤干细胞调控机制失调引起的异常组织。近年来,研究表明Hh-Gli1通路参与了多种肿瘤干细胞的活性调控。然而,有关该通路与胃癌干细胞方面的研究,却鲜有报道。我们的预实验提示:Hh-Gli1通路在干样胃癌细胞中的表达明显高于普通胃癌细胞。为此,我们提出假说:Hh-Gli1通路参与了干样胃癌细胞的活性调控,并通过调节Bcl-2以及EphB4/EphrinB2维持了干样胃癌细胞的抗药性与裸鼠成瘤性。为了验证这一假说,我们应用RNAi技术阻断Hh-Gli1通路,观察干样胃癌细胞特性以及Bcl-2、EphB4/EphrinB2等基因的变化情况,并利用MTT、annexinV标记、流式细胞仪、MicroPET/CT等方法分析干样胃癌细胞增殖、凋亡、细胞周期以及裸鼠移植瘤中血管生成、氧代谢的改变情况。本课题的开展不仅为以后胃癌干细胞的研究提供了新靶点,而且对于最终根除胃癌具有深远的意义。
Hedgehog-Gli1信号通路与干细胞特性的维持中密切相关,但是在胃癌肿瘤干细胞具体的作用及机制尚未阐明。本研究基于Hedgehog-Gli1信号通路与胃癌干样细胞的增殖、侵袭、耐药可能存在的关系,探讨以慢病毒载体为基础的基因治疗在胃癌领域的价值。本研究分选并培养出胃癌干样细胞,通过悬浮球培养、增殖实验、化疗耐药等鉴定其干细胞特性。同时构建Gli1慢病毒干扰载体,以克隆形成,CCK8实验,Transwell实验、化疗药物耐药等实验检测感染后干样细胞的增殖、迁移、自我更新等能力,发现其恶性生物学特性降低,并且增殖、抗凋亡基因Bcl-2、Ki-67表达降低,Caspase3表达上调,细胞凋亡比例升高。在同Hedgehog信号通路的拮抗剂cyclopamine进行比较后,证实慢病毒干扰载体的抑制效果更佳,有潜在的临床价值。除此之外,本研究还发现了锌指环状蛋白3(ZNRF3)可能作为上游的靶点下调Hedgehog信号通路,过表达ZNRF3可以下调Gli1,从而抑制胃癌细胞的增殖。在体外实验中,下调Gli1后,胃癌细胞成瘤速度和大小明显降低,并且瘤体内Ki-67,Bcl-2等基因等明显降低。综上,本研究从体内、体外两个层面和信号通路水平初步证实了干扰或降低Hedgehog信号通路将影响干样细胞的干细胞特性,并为靶向该信号通路的基因治疗奠定理论基础。
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数据更新时间:2023-05-31
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