平滑肌细胞(SMC)的表型转化参与多种血管疾病的发生和发展,mTOR信号通路的激活是引起SMC表型转化的重要机制。PC1的下调表达可激活mTOR等信号通路,引起多囊肾病。我们发现主动脉夹层(AD)血管中的SMC向合成型转化;PC1显著下调表达。据此推测:PC1下调表达通过激活mTOR信号通路参与AD 中SMC的表型转化。本课题拟通过RNAi技术消减收缩型SMC PC1的表达,观察能否使其向合成型转化;通过病毒介导PC1在合成型SMC中过度表达,观察能否使其向收缩型转化;观察下调和上调PC1表达后mTOR信号通路的关键位点是否被激活或抑制,mTOR的抑制剂后能否阻断PC1下调引起的SMC表型转化;在组织水平确定PC1下调表达、mTOR通路激活和SMC表型转化之间的关联性。从而阐明PC1下调表达与SMC表型转化之间的关系及其机理,为进一步探索AD的发病机制、寻找早期诊断与治疗方法提供理论依。
在研究过程中,我们获得了32例的正常主动脉标本和 25例的主动脉夹层(AD)标本,用于平滑肌细胞(SMC)的原代培养和组织水平研究。采用酶消化+组织块法获得了原代SMC,通过α-actin和Smoothelin染色鉴定。根据PC1的cDNA序列,设计得到3组PC1基因的干扰序列,通过RT-PCR比较干扰效果,其中shPC1-2对PC1mRNA的干扰效率最高,抑制率60%。通过WB比较对PC1蛋白的干扰效果:其中shPC1-2能够有效地干扰PC1 的蛋白表达,抑制率52%。采用pLVTHM 载体连接干扰序列,完成慢病毒穿梭质粒表达载体的构建;采用Tronolab 公司的慢病毒包装系统进行包装。确定在1:40滴度转染48h时具有较好的抑制效果。收缩型SMC经RNAi后,Real time PCR、WB和IHC检测显示PC1、α-SMA、MHC 和Smoothelin下调表达,Real time PCR、WB和IHC检测显示OPN上调表达。收缩型的SMC经RNAi后,Real time PCR、ELISA检测显示COL1A1和COL3A1上调表达。通过电镜检测到收缩型SMC经RNAi后,向合成型转化。从Addegene 购得人源PC1质粒,完成穿梭质粒pshuttle-CMV-PC1 的构建,细菌内同源重组法构建腺病毒质粒,完成重组腺病毒在293T 细胞中的包装。合成型SMC经转导后,Real time PCR、WB和IHC检测显示PC1、α-SMA、MHC 和Smoothelin上调表达,Real time PCR、WB和IHC检测显示OPN 下调表达。Real time PCR、ELISA检测显示COL1A1和COL3A1下调表达。电镜检测到合成型SMC经转导后,向收缩型转化。通过WB检测到AD来源标本mTOR、S6K和4EBP1等蛋白在整体表达水平上与对照组无明显差异,在磷酸化水平上上调。收缩型SMC在PC1 RNAi后,加入Rapamycin处理,Real time PCR、WB和IHC检测显示PC1、α-SMA MHC 和Smoothelin 不发生明显下调表达;OPN的表达不发生明显上调,Real time PCR、ELISA检测显示COL1A1和COL3A1表达水平不发生明显上调;SMC向合成型转化的趋势不明显。
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数据更新时间:2023-05-31
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